张金云 杨光 宋杰 阳桂芳 赵秀娟 吴世军 朱才华 刘姚
(1.广东生态工程职业学院园艺与食品学院，广东 广州 510520；
2.广东鼎澳农业科技发展有限公司，广东 阳江 529948)
澳洲坚果(Macadamina integrifolia Maiden＆Betche),山龙眼科(Proteaceae)澳洲坚果属(Maca-damia),又称夏威夷果,常绿果树[1],原产澳大利亚,味美而营养丰富,果仁奶香味浓郁,享有“干果之王”美誉[2-4]。随着果实全产业链加工品开发技术的成熟,市场呈现逐年增长态势,种植农户增产增收效益明显。我国是目前栽培种植面积最大的国家[5,6],并且种植面积年均增长逐年扩大,导致市场澳洲坚果种苗需求旺盛,优质种苗供不应求。常规袋装苗,基质配比是影响土壤结构原因之一,基质配比单一限制幼苗根系生长,基质营养吸收不充分。导致袋装苗生长周期长,育苗成本高,幼苗长势偏弱,大田移裁成活率低,管理成本高[7,8],本文通过筛选不同比例培养基质,确定最佳培养基质材料及不同基质比例,对于生产加快苗木出圃时间,提高澳洲坚苗木大田移栽成活率,节约种植农户生产成本有重要意义。
澳洲坚果育苗主要有扦插、嫁接和高空压条[9],我国商业栽培以嫁接繁育幼苗为主,有研究发现,育苗基质对幼苗生长、成活率、成苗质量影响较为明显。基质育苗是当前植物繁育主流技术之一。基质育苗技术已大规模运用于花卉、蔬菜、果树和林业等学科。育苗基质普遍泥炭、珍珠岩、蛭石、椰糠、锯木屑、菇渣、牛粪、羊粪等复配而成。较好基质配比能为幼苗发育提供良好土壤营养环境,促进幼苗生长。育苗基质的选择与比例,是影响幼苗培育成功的关键因素之一[10,11]。目前,澳洲坚果育苗基质选择与配比研究还不多见,因此选择合适的育苗基质,在生产实践中实现省时、省工和省材料,降低育苗成本,是生产育苗环节亟需要解决的问题之一。
本研究结合多年生产实践经验,试验以“桂热1号”“695”“A16”“OC”“JW”和“H2”等实生苗为研究对象,通过广东地区常见黄心土配比不同国产基质与少量无机肥,研究比较不同配比基质对两年生不同实生幼苗株高、地径、主根长、须根长、鲜重等生长发育指标的影响,计算分析不同配比基质对不同实生幼苗壮苗指数,筛选出合适基质配方,旨在为缩短育苗时间与降低生产成本,为生产实践中苗木培育提供参考。
1.1 试验材料
试验地点位于广州市天河区广东生态工程职业技术学院后山实训基地,不同品种澳洲坚果种子于2020年10月播种,待种子萌发幼苗生长趋于一致,高度约15cm幼苗时,将不同品种幼苗移栽在不同配比培养基质中。基质均为国产材料,包括草炭土、育苗袋(12cm×15cm),牛粪10%(体积比)、羊粪10%(体积比)、钙镁磷肥3%(重量比)、复合肥3%(重量比)。基质配比表见表1。
表1 基质配比表
1.2 试验设计
试验采用单因素完全随机区组设计,将草炭土与黄泥混匀配制成5种不同基质配比(2∶8、8∶2、5∶5、6∶4、4∶6),不同培养基质均加入牛粪10%(体积比)、羊粪10%(体积比)、钙镁磷肥0.5%(重量比)、复合肥1%(重量比)、蛭石5%(体积比)。2021年3月1日选取长势基本一致的澳洲坚果幼苗,移栽到灰色帆布育苗袋中,每袋种植1株,每个处理3次重复,每个重复300株。将杯状苗移至苗床上,按不同基质不同品种摆放整齐,定期浇灌,并于2022年3月1日对各项指标进行测定。
1.3 测定方法
将生长1a袋装苗取出,清水洗静,分别使用钢卷尺和游标卡尺测量苗高、主根长、须根长(精确到0.1cm)和地茎(精确到0.01mm)。备用幼苗表层水份蒸发后,电子称称鲜重(精确到0.01g)。壮苗指数计算参照宫彬彬等方法[12]。
壮苗指数＝(茎粗/株高＋根干重/地上部干重)×全株干质量
1.4 数据分析
采用Excel 2010、SPSS 15.0、sigmaplot 10.0进行数据整理和分析。利用单因素方差分析和LSD多重比较分析不同培养基质对幼苗生长。
2.1 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗株高的影响
不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗株高的影响见图1,由图1A可知,当培养基质为T2时,“桂热1号”幼苗株高显著高于对照(p＜0.05)。由图1B可知,当培养基质为T2时,“695”幼苗株高显著高于对照(p＜0.05)。由图1C可知,当培养基质为T1时,“A16”幼苗株高显著高于对照(p＜0.05)。由图1D可知,当培养基质为T2时,“OC”幼苗株高显著高于对照(p＜0.05)。由图1E可知,不同基质配比与对照比较,对幼苗株高影响不显著。由图1F可知,当培养基质为T2时,“H2”幼苗株高显著高于对照(p＜0.05)。
图1 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗株高的影响
2.2 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗地径的影响
不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗地径的影响见图2,由图2A可知,培养基质为T2时,“桂热1号”幼苗地径显著大于对照(p＜0.05)。由图2B可知,不同比例培养基质对“695”地径的影响显著大于对照(p＜0.05),T2＞T1＞T5＞T3＞T4,T2种 植“695”地径达最大1.87cm。由图2C可知,培养基质为T2、T1时,“A16”地径显著大于对照(p＜0.05)。由图2D可知,培养基质为T2时,“OC”地径显著大于对照(p＜0.05)。由图2E可知,不同比例培养基质对“JW”地径的影响显著大于对照(p＜0.05),T5＞T2＞T3＞T1＞T4,T5种植“JW”地径达最大1.31cm。由图3F可知,不同比例培养基质对“H2”地径影响显著大于对照(p＜0.05),T5＞T3＞T2＞T4＞T1,T5种植“H2”地径达最大1.38cm。
图2 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗地径的影响
2.3 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗主根长的影响
不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗主根长的影响见图3,由图3A可知,当培养基质为T1、T2、T3时,“桂热1号”幼苗主根长显著大于对照(p＜0.05)。由图3B可知,当培养基质为T2和T3时,“695”幼苗主根长显著大于对照(p＜0.05)。由图3C可知,当培养基质为T1、T2、T3时,“A16”幼苗主根长显著大于对照(p＜0.05)。由图3D可知,当培养基质为T2、T5时,“OC”幼苗主根长显著大于对照(p＜0.05)。由图3E可知,当培养基质为T1、T2、T3、T4时,“JW”幼苗主根长显著大于对照(p＜0.05)。由图3F可知,当培养基质为T1、T2、T3、T4、T6时,“H2”幼苗主根长显著大于对照(p＜0.05)。
图3 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗主根长的影响
2.4 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗须根长的影响
不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗须根长的影响见图4,由图4A可知,当培养基质为T2时,“桂热1号”幼苗须根长显著大于对照(p＜0.05)。由图4B可知,当培养基质为T1、T2和T3时,“695”幼苗须根长显著大于对照(p＜0.05)。由图4C可知,当培养基质为T1和T3时,“A16”幼苗须根长显著大于对照(p＜0.05)。由图4D可知,当培养基质为T2时,“OC”幼苗须根长显著大于对照(p＜0.05)。由图4E可知,当培养基质为T2、T3时,“JW”幼苗须根长显著大于对照(p＜0.05)。由图4F可知,当培养基质为T2时,“H2”幼苗须根长显著大于对照(p＜0.05)。
图4 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗须根长的影响
2.5 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗鲜重的影响
不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗鲜重的影响见图5,由图5A可知,当培养基质为T2和T5时,“桂热1号”幼苗鲜重显著大于对照(p＜0.05)。由图5B可知,当培养基质为T1和T2时,“695”幼苗鲜重显著大于对照(p＜0.05)。由图5C可知,当培养基质为T1和T5时,“A16”幼苗鲜重显著大于对照(p＜0.05)。由图5D可知,当培养基质为T2、T5时,“OC”幼苗鲜重显著大于对照(p＜0.05)。由图5E可知,当培养基质为T3时,“JW”幼苗鲜重显著大于对照(p＜0.05)。由图5F可知,当培养基质为T3、T5时,“H2”幼苗鲜重显著大于对照(p＜0.05)。
图5 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗鲜重的影响
2.6 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗壮苗指数的影响
由图6可知,培养基质为T1、T2、T3、T4、T5对不同品种澳洲坚果幼苗壮苗指数的影响与对照比较,壮苗指数呈现先增加后降低再增加的态势。幼苗为“桂热1号”时,不同培养基质壮苗指数T5＞T2＞T1＞T3＞T4＞CK；
幼苗为“695”时,壮苗指数T2＞T1＞T3＞CK＞T4＞T5；
幼苗为“A16”时,壮苗指数T2＞T5＞T1＞T3＞T4＞CK；
幼苗为“OC”时,壮苗指数T2＞T5＞T1＞T4＞T3＞CK。幼苗为“JW”时,壮苗指数T3＞T2＞T5＞T1＞T4＞CK。幼苗为“H2”时,壮苗指数T2＞T5＞T3＞T1＞T4＞CK。
图6 不同培养基质对不同品种澳洲坚果幼苗鲜重的影响
不同基质的物理结构和营养成分,能够起到相互补充的作用,改变基质根系生长微域环璄,保水透气,复合基质育苗对植物的地上部和地下部生长有一定的促进作用,在苗木繁育生产中应用较为普遍。株高、地径不仅可以直观地反映苗木的生长情况,也是描述植株生长快慢和健壮程度的重要指标[13]。本试验研究发现,当培养基质为T2时,“桂热1号”“695”“OC”“H2”幼苗株高显著高于对照。培养基质为T2时,“桂热1号”“695”“A16”幼苗地径显著大于对照,培养基质为T5时,“JW”“H2”幼苗地径显著大于对照,表现最好。
基质对植物的根系生长影响很大,适宜的基质配比有利于苗木根的形成、根系发育及其功能的恢复,促进植物地上部生长,如泥炭土、珍珠岩和有机肥都有利于植物根系的生长[14]。本试验研究发现,当培养基质为T2时,“桂热1号”“695”“A16”“OC”“JW”“H2”幼苗主根长显著大于对照。当培养基质为T2时,“桂热1号”“695”“OC”“JW”“H2”幼苗须根长显著大于对照。
适宜的基质配比能够促进植物生长发育,并提高作物的光合能力,有利于作物生长及碳水化合物的积累。苗木生物量是评价苗木质量的主要指标之一,生物量越大,苗木的质量越好[14]。当培养基质为T2时,“桂热1号”“695”“OC”幼苗鲜重显著大于对照；
当培养基质为T3时,“JW”“H2”幼苗鲜重显著大于对照；
当培养基质为T5时, “桂热1号”“A16”“H2”幼苗鲜重显著大于对照。
目前,许多园艺作物以形态指标和生物量指标来计算作物壮苗指数。壮苗指数在不同品种中表现出了较好的稳定性,体现出种苗内部与外部、地上部与地下部之间协调生长,指标符合种苗综合质量的特性,有效解决了单一指标在进行作物质量或品质评价时的片面性,指标在不同品种中也表现出较高的相关性,且指标测定简单,可以满足生产需要。试验结果发现,基质配比T2、T3、T5壮苗指数均比其它配比综合表现要好。其中T2对所有测试品种均表现良好。
综上所述,基质配比中泥炭土含量直接影响幼苗培育时幼苗生长发育。T2基质配比对澳洲坚果株高、地径、主根、须根、鲜重影响综合性状表现最好,因此T2基质配比,即草炭∶黄泥(8∶2)可作为澳洲坚果幼苗培育最佳基质。
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